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動脈粥樣硬化:第三節(jié) 血漿脂蛋白電泳分離定量法

一、血清脂蛋白聚丙烯酰胺凝膠電泳(一)原理以聚丙烯酰胺為支持介質,血清脂質用染料預染,使脂蛋白著色,經電泳后,一般可分出三條區(qū)帶,即β-、前β-、α-脂蛋白。并可用光密度掃描儀檢測其相對百分數,乘以總脂量,可求出三種脂蛋白的含量。(二)試劑與儀器1.試劑…

一、血清脂蛋白聚丙烯酰胺凝膠電泳

(一)原理

以聚丙烯酰胺為支持介質,血清脂質用染料預染,使脂蛋白著色,經電泳后,一般可分出三條區(qū)帶,即β-、前β-、α-脂蛋白。并可用光密度掃描儀檢測其相對百分數,乘以總脂量,可求出三種脂蛋白的含量。

(二)試劑與儀器

1.試劑

(1)分離膠緩沖液:三羥甲基氨基甲烷(Tris)18.3g,lmol/L鹽酸24ml,加水至100ml(pH8.9)。

(2)丙烯酰胺Ⅰ液:丙烯酰胺(Acr)15g,甲叉雙丙烯酰胺(Bis)0.4g,混勻。

(3)0.35%過硫酸銨(AP)

(4)四甲基乙二胺(TEMED)

(5)丙烯酰胺Ⅱ液:Acr10g、Bis2.5g、加水至100ml,混勻。

(6)濃縮膠緩沖液:Tris 6g、1mol/L HCl。

(7)0.002%核黃素,48ml,加水至100ml,pH6.7。

(8)電極緩沖液:甘氨酸2.88g、Tris0.6g、加水至1000ml,pH8.3。

(9)1%蘇丹黑B染色液:蘇丹黑B200mg,丙二醇20ml,水浴加溫至溶,離心,去除沉渣,冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

(10)40%蔗糖水溶液。

2.儀器

電泳儀、光密度掃描儀

(三)操作

1.制膠

(1)先準備清潔的0.5×7.5cm玻璃管,封口底。

(2)配制5%濃度凝膠:取丙烯酰胺Ⅰ液5ml,分離膠緩沖液5ml及Ap液10ml混合,再加TEMED,20μl,混均,用吸管注入每支玻璃管內使膠柱長約4cm,上層用蒸餾水沿管壁仔細加水到凝膠表面,千萬別沖散凝膠界面,使凝膠與空氣隔絕。靜置20~40min,等凝膠凝固后,除去上層水,再加上濃縮膠。

(3)濃縮膠制備:取丙烯酰胺Ⅱ液1.0ml、濃縮膠緩沖液0.5ml、核黃素液0.5ml和水2mlf1411.cn/hushi/混勻,加TEMED20μl混勻,迅速加入到分離膠上層約1cm高度,沿管壁仔細加蒸餾水覆蓋,千萬別沖散凝膠界面。置日光燈處聚合30min,也可在強光下聚合,聚合好的濃縮膠呈淡乳白色。凝膠可置4℃冰箱備用。

2.血清預染與加樣

在0.25ml血清中加入1%蘇丹黑B染色液0.025ml,搖勻,于37℃水溶保溫45min。離心除去沉渣,取預染血清30μl,加在聚合好的傾去水層的濃縮膠表面,再加一滴40%蔗糖液,混勻,然后小心地在上面加滿電極緩沖液,再裝在電泳槽上。

3.電泳

將電極液加入上下電泳槽內,靠樣品端的上槽接負極,下槽為正極,接通電源,調節(jié)電流為2-5mA/管,30~40min后,關閉電源。

4.剝膠

從電泳槽上取下凝膠管,用帶長針頭的注射器吸水注入凝膠與玻管內壁之間,使凝膠與玻管內壁分離,再用吸耳球推出凝膠。根據不同型號的光密掃描儀,凝膠掃描或者將裝有凝膠的玻管直接掃描定量。

電泳后凝膠一般出現三條區(qū)帶,從正極到負極依次為α-脂蛋白,β-脂蛋白和前β-脂蛋白,前β-脂蛋白處于濃縮膠和分離膠之間。

5.定量

漿凝膠或連同玻管一道置于光密度計掃描儀上進行掃描,計算每個峰的面積占各峰之和和總面積之比,即為每種脂蛋白組份的百分比。

二、血清脂蛋白瓊脂糖電泳法

(一)原理

以瓊脂糖凝膠為支持介質,先用脂類染料將血清進行預染,使血清脂蛋白著色,然后電泳。切下各脂蛋白區(qū)帶,加熱溶解,冷卻后比色;蛘哂霉饷芏扔嬛苯訏呙鑳x定各區(qū)帶。計算出α、β-和前β-脂蛋白的相對百分比。

(二)試劑

1.巴比妥HCl緩沖液(pH8.6,離子強度0.075):稱取巴比妥鈉15.5g,加入1mol/LHCl12ml,混勻溶解,加蒸餾水至1000ml,此為電極緩沖液。

2.巴比妥-HCl緩沖液(pH8.6,離子強度0.05):稱取巴比妥鈉10.3g,加入1mol/LHCI8ml,混勻www.med126.com溶解,加蒸餾水至1000ml,用于配瓊脂糖凝膠用。

3.0.8%瓊脂糖凝膠:取瓊脂糖0.8g,溶于配瓊脂糖凝膠的緩沖液100ml,置沸水煮溶或置于微波爐中熱溶解。

4.1%蘇丹黑B的石油醚-乙醇(1:4,V/V)溶液。

(三)操作

1.預染血清:吸血清0.2ml于一小試管中,再加蘇丹黑B染色液0.02ml及無水乙醇0.01ml。混勻后置于37℃水溶預染20min。取出各管,2000r/min離心5min,以除去多余的染料。

2.瓊脂糖凝膠板制備:將0.8%瓊脂糖凝膠溶解后,吸2.5ml到載玻片上,趁熱將刻點樣槽用有機玻璃蓋放在距載玻片一側近1cm處。一塊載玻片前后可打兩個槽點兩份樣品。

3.點樣與電泳:取下凝膠上有機玻璃蓋并顯出一加樣小槽。取預染血清40μl,注入此小槽中。在電泳槽內加入巴比妥電極緩沖液,樣品端為負極。以四層濾紙或沙布搭橋按10V/cm電泳,待預染血清電泳至最高或40min,切斷電源。

4.定量:

(1)切割比色法:將凝膠板上各脂蛋色帶分別切開置于裝入有3ml蒸餾水的試管內。切相應大小的空白瓊脂糖放入3ml蒸餾水試管內,為空白管,各管放入沸水煮3min,瓊脂糖溶解,待冷,以空白管調零點,于660nm處比色,記錄吸光度,以α-、前β-和β-脂蛋白三條區(qū)帶吸光度總和,比各自區(qū)帶的吸光度,求其百分比。這種半定量方法不夠準確,誤差很大。

(2)掃描定量:預染脂蛋白瓊脂糖凝膠電泳畢,其瓊脂糖凝膠板上有色帶,可直接置于光密度掃描儀掃描,并得出各區(qū)帶的百分比,如果輸入該病人的血脂總量,即可算出α-、前β-和β-脂蛋白的各自含量,如圖16-2所示。

圖16-2 血清脂蛋白電泳(瓊脂糖)

正常參考值(百分比):

α-脂蛋白 25.7±4.1%

前β-脂蛋白 21.0±4.4%

β-脂蛋白 53.3±5.3%

注意事項:①血清樣品要新鮮;②為了免去離心步驟,吸取預染血清時,應吸取上層,下層或管底可能有染料顆粒沉渣,否則應再離心后吸預染血清。

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