三、DNA聚合酶
早在1956年Kornberg等就從大腸桿菌提取液中發(fā)現(xiàn)了DNA聚合酶，并且得到了DNA聚合酶Ⅰ純品。DNA聚合酶Ⅰ是由分子量為109000的一條多肽鏈構(gòu)成，此酶可被枯草桿菌蛋白酶分解為兩個片段，一個片段分子量為76000，有聚合酶活性，并有3’→5外切酶活力，即Klenow片段（Klenow fragment)。另一個片段分子量為34000，具有5’→’3’外切酶活力。因此，DNA聚合酶具有幾種功能：一是聚合作用，以DNA為模板，將dNTP中的脫氧單核苷酸逐個加到3-OH末端。二是有’3’→5’外切酶活力，能識別和消除錯配的引物末端，與復(fù)制過程中校正功能有關(guān)。三是5’→3’外切酶活力，它能從5’端水解核苷酸，還能經(jīng)過幾個核苷酸起作用，切除錯配的核苷酸。1985年Mullis 等發(fā)明了PCR方法，以Klenow片段完成β-珠蛋白的PCR后，世界上許多實驗室就考慮用耐熱DNA聚合酶代替Klenow片段進(jìn)行PCR，使耐熱多聚酶的研究得以迅速發(fā)展。人們從生活于60℃（B.Stearothermophilus)到87℃（S.Solfatavicus)的許多菌中分離純化出耐熱DNA聚合酶，但有些酶不能耐受DNA變性所需溫度，所以無法應(yīng)用于PCR�，F(xiàn)就PCR反應(yīng)中常用的DNA聚合酶等作一詳細(xì)介紹。
1．Taq DNA聚合酶用Taq DNA聚合酶代替大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的Klenow片段是使PCR普及應(yīng)用的關(guān)鍵。Klenow片段不能耐受95℃的雙鏈DNA變性溫度，所以每次循環(huán)都要加入新酶；而Taq DNA聚合酶可以耐受93～95℃的高溫，避免了不斷補加多聚酶的繁瑣操作，同時使退火和延伸溫度得以提高，減少了非特異性產(chǎn)物和DNA二級結(jié)構(gòu)對PCR的干擾，增進(jìn)了PCR特異性、產(chǎn)量和敏感度，二者相比，其主要區(qū)別在于：①Klenow酶的最適溫度為37℃，擴增的產(chǎn)物并非全是目的序列，需用探針檢測。Taq酶則不僅產(chǎn)率高而特異性也高。它的最適溫度為74～75℃。因而使退火溫度可以提高，使退火嚴(yán)格性提高，減少錯配引物的延伸。②循環(huán)后期酶量漸感不足而產(chǎn)生平坡。到達(dá)平玻的循環(huán)次數(shù)，Klenow酶為20個（均用1μg基因組DNA開始)而Taq酶為30個。③延伸片段長度Taq酶為10kb以內(nèi)，而Klenow酶為400bp以內(nèi)。
Taq酶由水棲高溫菌（Thermus aquatics)YT1蓖株中分離而得。此菌于1969年由Brock分離自美國黃石公園溫泉，作為棲熱桿菌的標(biāo)準(zhǔn)菌株，其生長溫度為70～75℃。最初從中分離到分子量60～68KDa，比活性為2000～8000U/mg的DNA聚合酶。后來Cetus公司的Kary Mullis等又分離到比活為20萬U/mg的純酶，分子量為93910。此種9.4KDa酶的最適溫度為75～80℃，與單純核苷酸的結(jié)合率（Kcat)可達(dá)150核苷酸（nt)/s酶分子。以M13模板，用富含G+C的30bp引物延伸，70℃時Kact>60nt/s；55℃可達(dá)24nt/s；37℃時為1.5nt/s，而22℃時低至0.25nt/s。高于90℃時DNA合成活性甚差，這種高溫條件下，引物與模板已不能牢固結(jié)合。
在PCR反應(yīng)混合液中，Taq酶于92.5℃,95℃及97.5℃保持其50%活力的時間分別為130、40及5～6min，在50次循環(huán)的PCR中當(dāng)管內(nèi)最高溫度為95℃。每循環(huán)為20s時尚可保持65%活力。Taq 酶在95℃的半壽期為40min，故在PCR循環(huán)中選用的變性溫度，不宜高于95℃。
Taq酶現(xiàn)已可用基因重組的方法生產(chǎn)，商品名為Ampli Taq（Cetus公司)。Taq酶的完整基因長2499bp，在大腸桿菌中表達(dá)生產(chǎn)，含832個氨基酸。在氨基酸序列上與大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ有38%是一致的，包括對dNTP結(jié)合，引物與模板作用區(qū)均存在于Taq酶中。
Taq酶具有依賴DNA合成的5’→’3’外切酶活性，因此，模板上有一段退火的3’-磷酸化的“阻斷物”，會被逐個切除而不會阻止來自上游引物鏈的延伸，而對于5’-32P標(biāo)記的合成寡核苷酸引物，則無論是單鏈或是與模板復(fù)性，都未發(fā)現(xiàn)降解，所以該種活性不會影響PCR結(jié)果。Taq酶沒有3’→’5’外切酶活性，如果發(fā)生dNTP錯誤摻入，這種酶沒有校正能力，因此運用Taq酶進(jìn)行PCR，產(chǎn)物中點突變較多，對克隆等不太有利。一般錯摻率為1.25×10-4~1×10-5(4×dNTPs濃度分別為200μmol/L，Mg2+為1.5mmol/L，在55℃退火)。但不含3’→5’外切酶活性對測序有利。
2．影響酶活力的因素Taq酶的活力受Mg2+離子的影響。用鯡精DNA為模板，總dNTP濃度0.7～0.8mmol/L,Mg2+為2.0mmol/L時激活能力最高。濃度超過此值產(chǎn)生抑制。10mmol/l MgCl2抑制活力達(dá)40%～50%。dNTP能與Mg2+結(jié)合，故游離Mg2+只是結(jié)合后剩余的量。若總dNTP濃度高至4～6mmol/L時,Taq酶活力要降低20～30%，即底物抑制。
dNTP濃度低時PCR產(chǎn)率及特異性均增高，適合于用擴增摻入法標(biāo)記生物素及放射性元素。當(dāng)100μl PCR液中含dNTP各40μmol/L時就足以合成2.6μg的DNA（dNTP消耗一半)。
表22-3 有機溶劑對Taq聚合酶活力的影響
| 物質(zhì) | 濃度 | 活力（%) |
| 乙醇 | <3% | 100 |
| 10% | 110 | |
| 尿素 | <0.5mol/L | 100 |
| 1.0mol/L | 118 | |
| 1.5mol/L | 107 | |
| DMSO | <1% | 100 |
| 10% | 53 | |
| 20% | 11 | |
| 二甲基甲酰胺 | <5% | 100 |
| 10% | 82 | |
| 20% | 17 | |
| 甲酰胺 | <10% | 100 |
| 15% | 86 | |
| 20% | 39 | |
| SDS | 0.001% | 105 |
|
0.01% |
10 | |
|
0.1% |
<0.1% |
用鯡精DNA，70℃，10min內(nèi)dNTP的摻入量計算，標(biāo)準(zhǔn)條件為100%。
純9.4KDa Taq酶不含3’→5’核酸外切酶活力。誤摻入率取決于dNTP濃度。但Taq酶具有DNA依賴的鏈移位5’→3’核酸外切酶活力。對5’→3’32P標(biāo)記寡核苷酸單鏈，或與MB模板雜交時均只有極少的降解力。
中等濃度KCl能刺激Taq酶合成活力達(dá)50%～60%，最佳KCl濃度為50mmol/L，濃度更高有抑制作用，>200mmol/L的KCl可使酶失活。
加入50mmol/L NH4Cl或NH4Ac或NaCl,可產(chǎn)生中度抑制或無作用。
低濃度尿素、DMSO、DMF或甲酰胺影響不大，吐溫20/NP40可消除SDS（0.01%及0.1%)的抑制作用。
3．第二代耐熱DNA聚合酶Stoffel片段：Cetus公司的Stoffel將Taq DNA聚合酶的5’→3’外切酶活性片段（N端289個氨基酸)去除，稱為stoffel片段。其97.5℃的半衰期從Taq DNA聚合酶的5～6min提高到20min，同時該酶片段也對兩個或更多模板位點的擴增反應(yīng)即復(fù)合PCR（Multiplex PCR)更為有利。
